Santé Canada - Gouvernement du Canada
Sautez à la barre de navigation de gaucheSautez des barres de navigation au contenu
Aliments et nutrition

Annexe G

Glossaire des milieux
janvier 2006

 

GLOSSAIRE DES BOUILLONS,GÉLOSES ET AUTRES RÉACTIFS

Section C

Si vous avez besoin d'aide pour accéder aux formats de rechange, tels que PDF, MP3 et fichiers WAV, visitez la section d'aide sur les formats de rechange.

Version PDF


Campylobacter Agar with Charcoal and Deoxycholate (CCDA) (also known as : Modified CCDA Preston) [Gélose Campylobacter avec charbon de bois et désoxycholate (aussi connu comme: gélose CCDA Preston modifié]
Milieu de base
Extrait de viande 10,0 g
Peptone 10,0 g
Chlorure de sodium (NaCl) 5,0 g
Charbon de bois bactériologique 4,0 g
Hydrolysât de caséine 3,0 g
Desoxycholate de sodium 1,0 g
Sulfate ferreux (FeSO4) 0,25 g
Pyruvate de sodium 0,25 g
Gélose 12,0 g
Eau distillée 1,0 L
pH 7,5 ± 0,2  
Suppléments
Céfopérazone sodique 0,032 g
Amphotéricine B 0,010 g
Eau distillée 10,0 mL

Milieu complet:

Dissoudre tous les ingrédients sauf le supplément dans 1,0 L d’eau distillée et faire bouillir pour dissoudre complètement. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir à 50oC. Ajouter les ingrédients du supplément à l’eau distillée. Mélanger soigneusement et stériliser par filtration à l’aide d’un filtre de 0,2 µm et ajouter de façon aseptique au milieu de base. Mélanger soigneusement et verser dans des boîtes de Pétri stériles.

Carbohydrate Fermentation Agar (Rhamnose, Mannitol and Xylose) [Gélose de fermentation des glucides (rhamnose, mannitol et xylose)] (pour l’identification des Listeria)
Milieu de base
Peptone 10,0 g
Extrait de boeuf 1,0 g
Chlorure de sodium (NaCl) 5,0 g
Violet de bromocrésol 0,02 g
Gélose 15,0 g
Eau distillée 950 mL
pH 6,8 ± 0,2  
Suppléments (rhamnose, mannitol et xylose)
Glucide 20,0 g
Eau distillée 100,0 mL

Milieu complet:

Le milieu de base est disponible dans le commerce sous le nom de Base de gélose violet . Ajouter 31,0 g de base de gélose violet à l’eau distillée et mélanger soigneusement. Stériliser par filtration 100 mL de chacune des solutions aqueuses de rhamnose, de mannitol et de xylose à 20 %. Laisser refroidir le milieu de base, ajouter 50,0 mL de la solution de glucide stérile, puis couler en couches épaisses. Les géloses se conservent à 4oC pendant 2 à 3 semaines. Le laboratoire qui veut les garder plus longtemps doit effectuer les validations requises.

Carbohydrate Fermentation Broth [Bouillon de fermentation des glucides] (pour l’identification des Listeria)
Milieu de base
Peptone 10,0 g
Extrait de boeuf 1,0 g
Chlorure de sodium (NaCl) 5,0 g
Violet de bromocrésol 0,02 g
Eau distillée 950 mL
pH 6,8 ± 0,2  
Supplément (Rhamnose, mannitol et xylose)
Glucide 5,0 g
Eau distillée 100 mL

Milieu complet:

Le milieu de base est disponible dans le commerce sous le nom de Base de bouillon violet . Ajouter 16,0 g de base de bouillon violet à l’eau distillée et mélanger soigneusement. Répartir des volumes de 9,0 mL dans des éprouvettes de 16 x 125 mm contenant des ampoules de Durham. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Préparer des solutions à 5 % de tous les glucides, sauf l'esculine, et stériliser par filtration. Ajouter 1,0 mL de solution de glucide à 9,0 mL de base de bouillon de manière à obtenir une concentration finale de 0,5 % de glucide dans le bouillon.

Note : Ajouter l'esculine directement à la base de bouillon pour produire une solution à 0,5 % et stériliser à 115oC pendant 15 minutes. À la température ambiante, une solution d'esculine à 5 % est gélatineuse et ne peut être prélevée au moyen d'une pipette.

Cary and Blair Transport Media [Milieu de transport Cary et Blair]
Milieu de base
Chlorure de sodium (NaCl) 5,0 g
Thioglycolate de sodium (Na2S2Os) 1,5 g
Phosphate disodique (Na2HPO4) 1,1 g
Gélose 5,0 g
Eau distillée 1,0 L
pH 8,4 ± 0,2  
Supplément
Chlorure de calcium (CaCl2) 0,1 g
Eau distillée 10,0 mL

Milieu complet:

Suspendre les ingrédients sauf le CaCl 2 dans l’eau. Chauffer jusqu’à ébullition pour dissoudre complètement et refroidir à 50oC. Ajouter 9,0 mL de CaCl 2 à 1% stérilisé par filtration. Distribuer dans des éprouvettes d’une capacité de 6,0 à 8,0 mL dotées d’un bouchon vissant jusqu’à moins de 5,0 mm du bord. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes.

Casamino Acids-Yeast Extract (CYE) Broth [Bouillon aux acides casamino et extrait de levure]
Milieu de base
Acides casamino 30,0 g
Extrait de levure 4,0 g
Phosphate dipotassique (K2HPO4) 0,5 g
Eau distillée 1,0 L
pH 7,4 ± 0,2  

Milieu complet:

Dissoudre les ingrédients dans l’eau. Ajuster le pH et répartir des volumes de 10,0 mL dans des flacons de 50 mL. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes

Cetrimide Agar (Pseudosel ® Agar) [Gélose cétrimide (Gélose Pseudosel ® )]
Milieu de base
Hydrolysât de gélatine 20,0 g
Sulfate de potassium (K2SO4) 10,0 g
Chlorure de magnésium (MgCl2) 1,4 g
Cétrimide 0,3 g
Glycérol 10,0 mL
Gélose 13,6 g
Eau distillée 1,0 L
pH 7,2 ± 0,2  

Milieu complet:

Ajouter les ingrédients à l’eau distillée. Chauffer doucement et porter à ébullition. Stériliser à 118oC pendant 15 minutes à une pression de 13 livres/po 2 (psi). Répartir.

Coagulase Plasma [Plasma pour l’épreuve de la coagulase]

Le plasma de lapin homologué renfermant de l’EDTA est disponible sur le marché. Reconstituer selon les instructions du fabricant. On peut garder le plasma reconstitué au réfrigérateur jusqu’à 14 jours sans qu’il ne perde de son activité. Il ne faut pas l’utiliser en cas de contamination massive. Après avoir été gardée au réfrigérateur, la solution de plasma est assez froide pour retarder la formation d’un caillot pour 10-15 minutes. Pour éviter ce délai, il suffit de chauffer la solution de plasma à 35oC avant de l’utiliser.

Si le produit déshydraté n’est pas disponible, utiliser du plasma frais de lapin déposé de façon aseptique dans des contenants renfermant de l’EDTA (1,0 mL d’une solution à 15 % de sel de potassium par 100 mL de sang). Diluer le plasma à 1:2 ou 1:3 avec de l’eau distillée stérile et tester chaque lot avec des souches de staphylocoques à coagulase positive et à coagulase négative avant d’utiliser de façon routinière.

Cooked meat medium (CMM) [Milieu à la viande cuite]
Milieu de base
Coeur de boeuf 454,0 g
Protéose peptone 20,0 g
Dextrose 2,0 g
Chlorure de sodium (NaCl) 5,0 g
pH 7,2 ± 0,2  

Milieu complet:

On peut préparer ce milieu en répartissant 2,5 g d'un milieu préparé et déshydraté dans des éprouvettes de format 20 x 150 mm munies d’un bouchon qui visse; ajouter 20,0 mL d'eau distillée froide; mélanger soigneusement et laisser reposer de façon à permettre l'humidification complète de toutes les particules. Stériliser pendant 15 minutes à 121oC ou l'équivalent. On peut habituellement conserver le milieu préparé et stérilisé au réfrigérateur ( 0oC à 4oC) jusqu'à 4 semaines sans qu’il se détériore. Avant de l’utiliser, il faut désaérer le milieu réfrigéré à 100oC pendant 10 minutes et laisser refroidir à la température de la pièce.

Crystal Violet (Hucker’s) [Violet de gentiane de Hucker’s]
Milieu de base
Solution A
Violet de gentiane (teneur en colorant de 85 à 90 %) 2,0 g
Alcool éthylique (95%) 20,0 mL
Solution B
Oxalate d’ammonium 0,8 g
Eau distillée 80,0 mL

Milieu complet:

Dissoudre le violet de gentiane dans l’alcool et l’oxalate d’ammonium dans l’eau distillée. Mélanger les deux solutions et entreposer le mélange pendant 24 heures avant de l’utiliser.

Mise à jour : 2006-01-17 Haut de la page