ANNEXE G
Glossaire des milieux
janvier 2006
GLOSSAIRE DES BOUILLONS, GÉLOSES ET AUTRES RÉACTIFS
SECTION M
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| M Broth [Bouillon M] |
| Milieu de base |
| Extrait de levure |
5,0 g |
| Tryptone |
12,5 g |
| D-mannose |
2,0 g |
| Citrate de sodium |
5,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Phosphate dipotassique (K2HPO4) |
5,0 g |
| Chlorure de manganèse (MnCl2) |
0,14 g |
| Sulfate de magnésium (MgS04) |
0,8 g |
| Sulfate ferreux (FeSO4) |
0,04 g |
| Tween 80TM |
0,75 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,0 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans l'eau distillée et porter à ébullition une à deux minutes. Distribuer et stériliser à 121oC pendant 15 minutes.
| MacConkey Gélose [Gélose MacConkey] |
| Milieu de base |
| Peptone |
20,0 g |
| Lactose |
10,0 g |
| Sels biliaires no. 3 |
1,5 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Rouge neutre |
0,03 g |
| Violet de gentiane |
0,001 g |
| Gélose |
13,5 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,1 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans 1,0 L d'eau distillée et chauffer jusqu'à ébullition en faisant tournoyer fréquemment. Stériliser à l'autoclave à 121oC pendant 15 minutes et laisser refroidir à 45-50oC Couler la gélose dans les boîtes et laisser sécher en retirant partiellement les couvercles.
| Malachite Green (5%) [Vert de malachite (5%)] |
| Milieu de base |
| Vert de malachite |
5,0 g |
| Eau distillée |
100 mL |
Milieu complet:
Dissoudre 5,0 g de vert de malachite dans l'eau distillée pour produire 100 mL de solution. Agiter.
| Malt Extract* [Extrait de malt*] |
| Milieu de base |
| Extrait de malt |
30,0 g |
| Protéine mycologique |
5,0 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 5,4 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans l'eau distillée. Faire bouillir pour dissoudre complètement. Stériliser à 115oC pendant 10 minutes.
* Au besoin, pour les organismes osmophiles, ajouter 500 g de sucrose / litre avant la stérilisation
| mA-Mannitol (MAM) Gélose [Gélose mA-mannitol] |
| Milieu de base |
| Tryptone |
5,0 g |
| Mannitol |
5,0 g |
| Extrait de levure |
2,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
3,0 g |
| Chlorure de potassium (KCl) |
2,0 g |
Sulfate de magnésium heptahydraté
(MgSO4.7H2O) |
0,2 g |
| Chlorure ferreux hexahydraté (FeCl3 . 6H2O) |
0,1 g |
| Bleu de bromothymol |
0,08 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 8,0 ± 0,2 |
|
| Supplément |
| Désoxycholate de sodium |
100 mg |
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients de base, sauf la gélose, à 1,0 L d'eau. Dissoudre à la température de la pièce et ajuster le pH à 8,0. Ajouter la gélose et stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir et ajouter le désoxycholate de sodium. Mélanger soigneusement et distribuer dans des boîtes de Pétri. Ce milieu peut se garder deux mois à 4oC.
| Mannitol Maltose Agar [Gélose mannitol maltose] |
| Milieu de base |
| PhytoneTM (Hydrolysât papaique de farine de soja) |
5,0g |
| PolypeptoneTM (mélange égal d'hydrolysâts de caséine et de tissu animal) |
5,0 g |
| Extrait de boeuf |
5,0 g |
| D-mannitol |
10,0 g |
| Maltose |
10,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
20,0 g |
| Gélose |
13,0 g |
| Solution-mère de colorant 1000X * |
1,0 mL |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,8 ± 0,2 |
|
| Supplément: * solution-mère de colorant 1000X |
| Bleu de bromothymol |
4,0 g |
| Rouge de crésol |
4,0 g |
| Éthanol à 95% |
100 mL |
Milieu complet:
Mettre les ingrédients en suspension et faire bouillir pour dissoudre. Ajuster le pH et stériliser pendant 15 minutes à 121oC
| mA-Trehalose (MAT) Agar [Gélose mA-tréhalose] |
| Milieu de base |
| Tryptone |
5,0 g |
| Tréhalose |
5,0 g |
| Extrait de levure |
2,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
3,0 g |
| Chlorure de potassium (KCl) |
2,0 g |
Sulfate de magnésium heptahydraté
(MgSO4 .7H2 O) |
0,2 g |
| Chlorure ferreux hexahydraté (FeCl3.6H2O) |
0,1 g |
| Bleu de bromothymol |
0,04 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 8,0 ± 0,2 |
|
| Suppléments |
| Éthanol |
1,0 mL |
| Ampicilline |
20,0 mg |
| Désoxycholate de sodium |
100 mg |
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients de base, sauf la gélose, à 1,0 L d'eau. Dissoudre à la température de la pièce et ajuster le pH à 8,0. Ajouter la gélose et stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir et ajouter les suppléments. Mélanger soigneusement et distribuer dans des boîtes de Pétri. Ce milieu se garde deux mois à 4oC.
| Methyl Red test reagent [Réactif pour l'épreuve du rouge de méthyle] |
| Milieu de base |
| Rouge de méthyle |
0,10 g |
| Éthanol à 95% |
300 mL |
| Eau distillée |
200 mL |
Milieu complet:
Dissoudre le rouge de méthyle dans 300 mL d'éthanol et diluer à 500 mL avec de l'eau distillée. Entreposer au réfrigérateur
Microbial Content Test Agar (also known as Tryptic Soy Agar with Lecithin and Polysorbate 80 [TSALT], and Casein Soy Peptone with Polysorbate 80 and Lecithin)
[Gélose d'épreuve de contenu microbien] (aussi appelée gélose tryptique-soja avec lécithine et polysorbate 80 et peptone caséine-soja avec polysorbate 80 et lécithine) |
| Milieu de base |
| Hydrolysât pancréatique de caséine |
15,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Tween 80TM (polysorbate 80) |
5,0 g |
| Hydrolysât enzymatique de farine de soja |
5,0 g |
| Lécithine |
0,7 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,3 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients à l'eau distillée. Mélanger soigneusement. Chauffer doucement et porter à ébullition. Laisser bouillir pendant 1 à 2 minutes. Distribuer dans des flacons ou des éprouvettes et stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Verser dans des boîtes de Pétri stériles ou laisser dans les éprouvettes
| m-FC agar (without rosolic acid*) [Gélose m-FC] (sans acide rosolique*) |
| Milieu de base |
| Tryptose |
10,0 g |
| Protéose peptone no.3 |
5,0 g |
| Extrait de levure |
3,0 g |
| Lactose |
12,5 g |
| Sels biliaires no.3 |
1,5 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Bleu d'aniline |
0,1 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,4 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Porter le mélange à ébullition, laisser refroidir à 50-55oC et ajuster le pH. Ne pas stériliser à l'autoclave. Verser de 15,0 à 20,0 mL de gélose dans des boîtes de Pétri. Les boîtes de Pétri se gardent 4 semaines à 4oC.
* On a observé que la formulation sans acide rosolique fonctionne mieux avec la méthode MFQH pour les coliformes. Si l'acide rosolique est ajouté au milieu, utiliser 10,0 mL d'une solution à 1% dans du NaOH à 0,2N. Ajouter après que les autres ingrédients aient été dissous par chauffage et continuer à bouillir pour une minute supplémentaire. Ce supplément est aussi disponible dans le commerce. Suivre les instructions du fabricant.
| Milk agar [Gélose au lait] (Il y a plusieurs milieux sous les noms de Gélose au lait, Gélose au lait écrémé, Gélose au lait pour numération en plaque. La formulation suivante est spécifiée pour utilisation avec la méthode MFLP-61, une méthode MFQH pour P. aeruginosa) |
| Milieu de base: Mélange A |
| Lait écrémé en poudre instantané |
100 g |
| Eau distillée |
500 mL |
| Milieu de base: Mélange B |
|
| Bouillon nutritif |
12,5 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
2,5 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
500 mL |
Milieu complet:
Stériliser les mélanges A et B séparément, laisser refroidir à 50oC. Combiner aseptiquement les deux mélanges et verser 20,0 mL par boîte.
| Modified CCDA Preston - see Campylobacter Agar with Charcoal and Deoxycholate (CCDA)
[Gélose CCDA Preston modifié - voir Gélose pour Campylobacter avec charbon de bois et désoxycholate (CCDA)] |
Modified Cellobiose - Polymyxin B - Colistin Agar (mCPC)
[Gélose cellobiose - polymyxine B - colistine modifiée] |
| Milieu de base Solution 1 |
| Peptone |
10,0 g |
| Extrait de boeuf |
5,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
20,0 g |
| Solution-mère de colorant 1000x* |
1,0 mL |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
900 mL |
| pH 7,6 |
|
| Milieu de base Solution 2 |
|
| Cellobiose |
10,0 g |
| Colistine |
400,000 unités |
| Polymyxine B |
100,000 unités |
| Eau distillée |
100 mL |
| Supplément Solution de colorant 1000x |
|
| Bleu de bromothymol |
4,0 g |
| Rouge de crésol |
4,0 g |
| Éthanol à 95% |
100 mL |
Milieu complet:
Solution 1
Ajuster le pH à 7,6. Porter à ébullition pour dissoudre la gélose. Refroidir à une température de 48-55oC.
*Solution de colorant 1000x
Pour une coloration uniforme du milieu, utiliser la solution-mère plutôt que de peser chaque fois les colorants individuels. Dissoudre les colorants dans l'éthanol de façon à obtenir une solution-mère de 4 % (p/v). En utilisant 1 mL de cette solution par litre de gélose de mCPC, on obtient 40 mg de bleu de bromothymol et 40 mg de rouge de crésol par litre.
Solution 2
Dissoudre la cellobiose dans l'eau distillée en chauffant doucement. Laisser refroidir. Ajouter les antibiotiques.
Milieu complet :
Ajouter la solution 2 à la solution 1 refroidie, mélanger et couler en boîtes de Pétri. La couleur finale varie du vert foncé au brun-vert.
NOTE : Ce milieu, comme le milieu TCBS, est très inhibiteur et n'a pas besoin d'être stérilisé. On peut entreposer le milieu deux semaines au réfrigérateur.
| Modified E. coli Broth with Novobiocin (mEC-n) [Bouillon E. coli modifié avec novobiocine] |
| Milieu de base |
| Tryptone |
20,0 g |
| Sels biliaires no. 3 |
1,5 g |
| Lactose |
5,0 g |
| Phosphate dipotassique (K2HPO4) |
4,0 g |
| Phosphate monopotassique (KH2PO4) |
1,5 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| Supplements |
|
| Novobiocine |
100 mg |
| Eau distillée |
1,0 mL |
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients, sauf la novobiocine, à l'eau distillée. Mélanger soigneusement et distribuer en portions de 225 mL. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir. Distribuer en portions de 225 mL. Ajouter 50,0 µL de solution de novobiocine (stérilisée par filtration à l'aide d'un filtre de 0,45 µm) immédiatement avant d'ajouter l'échantillon.
| Modified Fraser Broth (MFB) - see Fraser Broth [Bouillon Fraser modifié] - voir Bouillon Fraser |
| Modified HC Agar (mHC) [Gélose HC modifiée] |
| Milieu de base |
| Tryptone |
20,0 g |
| Sels biliaires no. 3 |
1,12 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Sorbitol |
20,0 g |
| 4-méthylumbélliferyl- ß -D-glucuronide (MUG) (facultatif) |
0,10 g |
| Violet de bromocrésol à 1.6% |
0,94 mL |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,4 ± 0,2 |
|
| Suppléments |
| *Cefsulodine à 1% (1.0 g/100 mL) |
1,0 mL |
| Tellurite de potassium à 0,1% (0.1g/100mL) |
2,5 mL |
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients de base dans 1,0 L d'eau distillée tout en agitant pour dissoudre les ingrédients (sauf la gélose) et ajuster le pH. Chauffer jusqu'à ébullition pour dissoudre la gélose. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir à 45- 50oC. Stériliser les suppléments par filtration et ajouter au milieu de manière aseptique. Faire tournoyer doucement le milieu (sans créer de bulles d'air) afin de bien répartir les suppléments. De manière aseptique, distribuer la gélose dans des boîtes de Pétri et laisser solidifier. Faire sécher les géloses sous une hotte à flux laminaire afin d'enlever l'excès d'humidité. Conserver les géloses à 4oC pendant 2 semaines.
* La cefsulodine n'est pas nécessaire si l'on utilise le bouillon d'enrichissement BEE.
| Note: Les suppléments sont disponibles commercialement. Si l'on achète un produit reconstitué (forme liquide), assurer que la concentration finale dans le milieu ci-dessus est adéquate. Pour la gélose mHC, la concentration du tellurite de potassium est de 2.5 mg/L. |
| Modified Oxford Agar (MOX) [Gélose Oxford modifiée] |
| Milieu de base |
| Base de gélose au sang Columbia (selon la marque utilisée) |
39,0 - 44,0 g |
| Gélose |
2,0 g |
| Esculine |
1,0 g |
| Citrate d'ammonium ferrique |
0,5 g |
| Chlorure de lithium (LiCl) |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| Suppléments |
| Moxalactame |
0,015 g |
| Sulfate de colistine |
0,01 g |
| Eau distillée |
10,0 mL |
Milieu complet:
La gélose Oxford modifiée est une Gélose sélective pour Listeria qui a été légèrement modifiée (Formulation Oxford).
Ajouter les ingrédients, sauf le supplément, à l'eau distillée. Chauffer doucement jusqu'à dissolution. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Faire refroidir rapidement à 46oC dans un bain-marie. Ajouter le supplément stérilisé par filtration au milieu de base, mélanger soigneusement et répartir.
| Modified PE-2 Medium (PE2) [Milieu PE-2 modifié] |
| Milieu de base |
| Peptone |
20,0 g |
| Extrait de levure |
3,0 g |
| Solution de violet de bromocrésol à 2% dans l'alcool |
2,0 mL |
| Eau distillée |
1,0 L |
| Supplément |
| Pois de semence d'Alaska non traités |
8-10/éprouvette |
Milieu complet:
Faire dissoudre les ingrédients en chauffant doucement au besoin et répartir des portions de 19,0 mL dans des éprouvettes de 20 x 150 mm munies d'un bouchon qui visse et contenant chacune de 8 à 10 pois de semence d'Alaska non traités. Stériliser pendant 30 minutes à 121oC ou l'équivalent. On peut habituellement conserver le milieu préparé stérilisé à une température de 0 à 4oC sans détérioration, jusqu'à 4 semaines. Avant de l'utiliser, il faut désaérer le milieu réfrigéré en chauffant à 100oC pendant 10 minutes. Laisser refroidir à la température de la pièce avant de l'utiliser.
| Modified Semi-Solid Rappaport Vassiliadis (MSRV) Medium
[Milieu semi-solide de Rappaport Vassiliadis modifié] |
| Milieu de base |
| Tryptose |
4,59 g |
| Hydrolysât de caséine |
4,59 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
7,34 g |
| Phosphate monopotassique (KH2PO4) |
1,47 g |
| Chlorure de magnésium (MgCl2) |
10,93 g |
| Oxalate de vert de malachite |
0,037 g |
| Gélose |
2,7 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 5,2 ± 0,2 |
|
| Supplément |
| Novobiocine |
20,0 mg |
| Eau distillée |
10,0 mL |
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients de base à l'eau distillée. Chauffer jusqu'à dissolution pour dissoudre. Ne pas stériliser à l'autoclave. Laisser refroidir à 50oC et ajouter 10 mL de la solution de novobiocine. Mélanger soigneusement et distribuer 18,0 mL par boîte de Pétri stérile. Les boîtes doivent être complètement sèches (1 à 3 heures) avant de remettre les couvercles en place. Elles peuvent être laissées à la température de la pièce pour la nuit avant d'être réfrigérées. Les boîtes de MSRV préparées doivent être conservées debout. On peut les conserver jusqu'à 2 semaines au réfrigérateur, dans l'obscurité. Examiner les boîtes aussitôt que possible après l'incubation car des réactions de mobilité faussement positives peuvent se développer à la température de la pièce.
Supplément:
Dissoudre la novobiocine dans l'eau et stériliser par filtration. Distribuer en quantités suffisantes et conserver au congélateur.
| Modified Sorbitol MacConkey Agar (TCCSMAC) [Gélose MacConkey sorbitol modifiée (MACSTCC)] |
| Milieu de base (Gélose MacConkey sorbitol) Voir la Note ci-dessous |
| Peptone |
Difco: 15,5 g [Oxoid: 20 g] |
| Protéose peptone |
Difco: 3,0 g [Oxoid: 0 g] |
| Sorbitol |
10,0 g |
| Sels biliaire no 3 |
1,5 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Rouge neutre |
0,03 g |
| Violet de gentiane |
0,001 g |
| Gélose |
15,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,1 ± 0,2 |
|
| Suppléments |
| * Cefsulodine à 1% (1,0 g/100mL) |
1,0 mL |
| Cefixime (1,0 mg/mL) |
50,0 µL |
| Tellurite de potassium à 0,1% (0,1g/100mL) |
2,5 mL |
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients de base dans 1,0 L d'eau distillée en agitant pour dissoudre tous les ingrédients (sauf la gélose) et ajuster le pH. Chauffer jusqu'à ébullition pour dissoudre la gélose. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir à 45- 50oC. Stériliser les suppléments par filtration et ajouter au milieu de manière aseptique. Faire tournoyer doucement le milieu (sans créer de bulles d'air) afin de bien répartir les suppléments. De manière aseptique, distribuer la gélose dans les boîtes de Pétri et laisser solidifier. Faire sécher les boîtes sous une hotte à flux laminaire afin d'enlever l'excès d'humidité. Conserver les géloses à 4oC pendant 2 semaines.
* La cefsulodine n'est pas nécessaire si l'on utilise le bouillon d'enrichissement BEE.
Note: Le milieu de base (gélose MacConkey sorbitol) est disponible commercialement chez plusieurs fabricants tels que BD-Difco et Oxoid. La formulation du milieu de base peut varier légèrement (comme ci-dessus) et peut être interchangeable. Si un milieu de base d'une autre source est utilisé, il incombe au superviseur du laboratoire d'en assurer l'équivalence.
Les suppléments sont disponibles commercialement. Si l'on achète un produit reconstitué (forme liquide), assurer que la concentration finale dans le milieu ci-dessus est adéquate. Pour la gélose MACSTCC, la concentration de tellurite de potassium est de 2,5 mg/L et de cefixime est de 0,050 mg/L. |
| Modified TSB with Novobiocin (mTSB-n) [TSB modifié avec novobiocine] |
| Milieu de base |
| Bouillon de trypticase-soja ou bouillon de tryptone-soja |
30,0 g |
| Sels biliaires no. 3 |
1,5 g |
| Phosphate dipotassique (K2HPO4) |
1,5 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,4 ± 0,2 |
|
| Supplément solution de novobiocine (100mg/mL) |
| Novobiocine (sel sodique) |
100 mg |
| Eau distillée |
1,0 mL |
Milieu complet:
Dissoudre les ingrédients, sauf la novobiocine, dans l'eau distillée. Chauffer jusqu'à ébullition et répartir. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Après refroidissement, conserver à 4oC. Avant usage, ajouter 0,2 mL de solution de novobiocine.
Supplément:
Dissoudre la novobiocine. Stériliser par filtration à l'aide d'un filtre de 0,2 µm et d'une seringue. Se conserve pendant plusieurs mois dans une bouteille brune à 4oC.
| Motility Test Medium [Milieu pour l'épreuve de mobilité] |
| Milieu de base |
| Extrait de boeuf |
3,0 g |
| Hydrolysât pancréatique de gélatine |
10,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Gélose |
4,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,2 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans l'eau et mélanger soigneusement. Chauffer en agitant fréquemment et faire bouillir pendant une minute pour dissoudre complètement. Répartir et stériliser à 121oC pendant 15 minutes
Motility Test Medium with 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC)
[Milieu pour l'épreuve de mobilité avec 2,3,5-chlorure de triphényltétrazolium (TTC)] |
| Milieu de base |
| Hydrolysât pancréatique de gélatine |
10,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Extrait de boeuf |
3,0 g |
| Gélose |
3,5 g |
| TTC |
0,05 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,2 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans l'eau et mélanger soigneusement. Chauffer en agitant fréquemment et faire bouillir pendant une minute pour dissoudre complètement. Répartir et stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Ce milieu doit être conservé en position debout à 4oC et à l'abris de la lumière. Dans ces conditions, le milieu se conserve 26 semaines à partir de la date de la fabrication.
| Note: Ce milieu peut être préparé en ajoutant le TTC au milieu commercial régulier pour l'épreuve de mobilité. |
| mPAC Agar [Gélose mPAC] |
| Milieu de base |
| Gélose |
12,0 g |
| L-lysine HCl |
5,0 g |
| Chlorure de sodium (NaCl) |
5,0 g |
| Thiosulfate de sodium |
5,0 g |
| Extrait de levure |
2,0 g |
Sulfate de magnésium heptahydraté
(MgSO4.7H2O) |
1,5 g |
| Lactose |
1,25 g |
| Sucrose |
1,25 g |
| Xylose |
1,25 g |
| Citrate d'ammonium et de fer |
0,80 g |
| Rouge de phénol |
0,08 g |
| Acide nalidixique |
0,037 g |
| Kanamycine |
8,0 mg |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,2 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Ajouter les ingrédients à l'eau distillée et porter le volume à 1,0 L. Mélanger soigneusement. Chauffer doucement et porter à ébullition. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes et répartir.
MR-VP medium - See Buffered Glucose Broth and Buffered Glucose Salt Broth (Vibrio)
[Milieu MR-VP - voir Bouillon de glucose tamponné et Bouillon de glucose et sel tamponné (Vibrio)] |
| Mueller-Hinton Agar (MH)* [Gélose Mueller-Hinton *] |
| Milieu de base |
| Infusion de boeuf |
300 g |
| Hydrolysât acide de caséine, technique |
17,5 g |
| Amidon soluble |
1,5 g |
| Gélose |
17,0 g |
| Eau distillée |
1,0 L |
| pH 7,3 ± 0,2 |
|
Milieu complet:
Suspendre les ingrédients dans l'eau distillée. Chauffer jusqu'à ébullition pour dissoudre complètement. Stériliser à 121oC pendant 15 minutes. Laisser refroidir et répartir.
* Ajouter du NaCl à une concentration finale de 2 à 3% lorsqu'utilisé pour les Vibrio spp halophiles.
| Mueller-Hinton Agar with Blood [Gélose Mueller-Hinton avec sang] |
Milieu complet:
Ajouter 50,0 mL de sang de cheval défibriné stérile pour 950 mL de gélose Mueller-Hinton (concentration finale du sang de 5%).
|
